GB 14934-2016 消毒食（饮）具检测新标准4月实施

2017年03月31日 ｜ 来源：中农孚德CFTest/整理编辑

中华人民共和国国家标准 GB 14934-2016 食品安全国家标准 消毒餐（饮）具

中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会发布

2016-10-19发布 2017-04-19实施

 

前言

本标准代替GB 14934-1994《食（饮）具消毒卫生标准》。

本标准与GB 14934-1994相比，主要变化如下：

——标准名称修改为“食品安全国家标准 消毒餐（饮）具”；

——修改了范围；

——修改了感官要求、理化指标和微生物限量；

——取消了食（饮）具消毒卫生管理规范要求；

——修改了附录A、附录B；

——增加了附录C。

 

食品安全国家标准

消毒餐（饮）具

1   范围

本标准规定了消毒餐（饮）具的卫生要求。

本标准适用于餐饮服务提供者、集体用餐配送单位、餐（饮）具集中清洗消毒服务单位提供的消毒餐（饮）具，也适用于其他消毒食品容器和食品生产经营工具、设备。不经清洗直接使用的餐（饮）具可参照执行。

 

2   技术要求

2.1   感官要求

餐（饮）具应表面光洁，不得有附着物，不得有油渍、泡沫、异味。

 

2.2   理化指标

理化指标应符合表1的规定。

     表1  洗消剂残留量^a

 

2.3   微生物限量

微生物限量应符合表2的规定。

 表2  微生物限量

 

2.4   其他要求

所用洗涤剂、消毒剂应符合GB 14930.1、GB 14930.2的规定。

 

附录A

餐（饮）具采样方法

 

A.1  理化指标的餐（饮）具采样

A.1.1  将待检的餐（饮）具（碗、盘、碟、口杯、酒杯等），用蒸馏水分3次～5次冲洗整个内表面（按照每100cm2表面积使用100mL蒸馏水的比例），制成样液备用。

A.1.2  将匙（不包括匙柄）、筷子下段（进口端约5cm）置入适量蒸馏水中（按照每100cm2表面积使用100mL蒸馏水的比例），充分振荡20次，制成样液备用。

 

A.2  微生物指标的餐（饮）具采样

A.2.1  大肠菌群（发酵法）及致病菌指标的餐（饮）具采样

A.2.1.1  筷子：以5根筷子为一件样品。将5根筷子的下段（进口端）5cm处（长5cm×周长2cm×5根，50cm2），置10mL灭菌生理盐水大试管中，充分振荡20次后，移出筷子。视具体情况，5根筷子可分别振荡。或用无菌生理盐水湿润棉拭子，分别在5根筷子的下段（进口端）5cm处表面范围均匀涂抹3次后，用灭菌剪刀剪去棉拭子与手接触的部分，将棉拭子置相应的液体培养基内。

A.2.1.2  其他餐（饮）具：以1mL无菌生理盐水湿润10张2.0cm×2.5cm（5cm2）灭菌滤纸片（总面积为50cm2）。选择餐（饮）具通常与食物接触的内壁表面或与口唇接触处，每件样品分别贴上10张湿润的灭菌滤纸片。30s后取下，置相应的液体培养基内。或用无菌生理盐水湿润棉拭子，分别在2个25cm2（5cm×5cm）面积范围来回均匀涂抹整个方格3次后，用灭菌剪刀剪去棉拭子与手接触的部分，将棉拭子置相应的液体培养基内。4h内送检。

 

A.2.2  大肠菌群（纸片法）指标的餐（饮）具采样

A.2.2.1  筷子：以5根筷子为一件样品，用无菌生理盐水湿润餐具大肠菌群快速检验纸片后，立即将筷子下段（进口端）（约5cm）涂抹纸片，每件样品涂抹两张快速检验纸片。置无菌塑料袋内。

A.2.2.2  其他餐（饮）具：用无菌生理盐水湿润餐具大肠菌群快速检验纸片后，立即贴于餐（饮）具通常与食物或口唇接触的内壁表面或与口唇接触处，每件贴两张快速检验纸片，30s后取下，置无菌塑料袋内。

 

A.2.3  质量控制

A.2.3.1  以上操作时，可用无菌磷酸盐缓冲液代替无菌生理盐水作为采样和稀释液。

A.2.3.2  采样过程中，应对纸片或棉拭子按照采样步骤同时处理，不经过采样步骤，作为空白对照。

 

附录B

大肠菌群检验方法

 

注：本方法适用于餐（饮）具大肠菌群检验。

 

B.1  发酵法

 

B.1.1  培养基

B.1.1.1  月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤。分装每管10mL。

B.1.1.2  双料月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤。分装每管10mL。

B.1.2  发酵和结果观察

B.1.2.1  筷子：如为棉拭子涂抹采样，直接将采样后的棉拭子置月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤内。如为生理盐水振荡采样，直接将采样后的10mL液体全部加入双料月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤内。36℃±1℃培养24h～48h。

B.1.2.2  其他餐（饮）具：直接将采样后的棉拭子或全部纸片置月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤内。36℃±1℃培养24h～48h。

B.1.2.3  结果观察及后续复发酵试验：按照GB 4789.3规定的方法进行。

 

B.2  纸片法

B.2.1  培养基

采用专用的大肠菌群快速检验纸片。纸片规格为5cm×5cm（面积25cm2）。

B.2.2  培养和结果观察

将已采样的大肠菌群快速检验纸片置36℃±1℃培养16h～18h，观察结果。结果判定按产品说明书执行。

 

B.3  质量要求

B.3.1  对于餐（饮）具的大肠菌群检验，采用发酵法和纸片法均可。以发酵法为仲裁方法。

B.3.2  若空白对照有微生物生长，则此次检测结果无效。

 

B.4  结果报告

综合以上试验结果，报告每50cm2检出或未检出大肠菌群。

 

附录C

沙门氏菌检验方法

 

注：本方法适用于餐（饮）具沙门氏菌检验。

 

C.1  培养基

缓冲蛋白胨水。分装每管10mL或90mL。

 

C.2  预增菌

C.2.1  筷子：如为棉拭子涂抹采样，直接将采样后的棉拭子置10mL缓冲蛋白胨水内。如为生理盐水振荡采样，直接将采样后的10mL液体全部加入90mL缓冲蛋白胨水内。36℃±1℃培养18h～24h。

C.2.2  其他餐（饮）具：直接将采样后的棉拭子或全部纸片置10mL缓冲蛋白胨水内。36℃±1℃培养18h～24h。

 

C.3  后续试验

进一步的增菌、分离、生化鉴定、血清学鉴定按照GB 4789.4规定的方法进行。

 

C.4  结果报告

综合以上生化试验和血清学鉴定的结果，报告每50cm2检出或未检出沙门氏菌。